2026 / 03

DOI: 10.24075/rbh.2026.171
Авторские права: © 2026 принадлежат авторам. Лицензиат: РНИМУ им. Н.И. Пирогова.
Статья размещена в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY).

МНЕНИЕ

Методические подходы к обоснованию нормативов качества и безопасности различных видов вод и почвы населенных мест на биологической модели Danio rerio

Н. В. Зайцева , М. А. Землянова , Д. М. Каменских , Е. В. Пескова
Информация об авторах

Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Пермь, Россия

Для корреспонденции: Дарья Михайловна Каменских
ул. Монастырская, д. 82, г. Пермь, 614045, Россия; ur.ksircf@aniretet

Информация о статье

Вклад авторов: Н. В. Зайцева — концепция, дизайн исследования; М. А. Землянова — дизайн исследования, редактирование текста статьи; Д. М. Каменских, Е. В. Пескова — написание текста статьи.

Статья получена: 10.07.2026 Статья принята к печати: 07.08.2026 Опубликовано online: 07.09.2026
|
  1. Гайдай Е. А., Гайдай Д. С. Генетическое разнообразие экспериментальных мышей и крыс: история возникновения, способы получения и контроля. Лабораторные животные для научных исследований. 2019; (4): 78–85. DOI: 10.29296/2618723X-2019-04-09.
  2. Rydell-Törmänen K, Johnson JR. The applicability of mouse models to the study of human disease. Methods Mol Biol. 2019; 1940: 3–22. DOI: 10.1007/978-1-4939-9086-3_1.
  3. Качанов Д. А., Лакеенков Н. М., Левикин К. Е., Блаженко А. А., Лапкина Г. Я., Багатурия Г. О. и др. Danio rerio (zebrafish) как универсальный модельный объект в доклинических исследованиях. Forcipe. 2018; 1 (1): 49–54.
  4. Лащенова Л. И., Перфилова В. Н., Снигур Г. Л., Калуев А. В. Использование рыб зебраданио (Zebrafish) в качестве модельных объектов для изучения возраст-ассоциированных заболеваний (обзор). Научные результаты биомедицинских исследований. 2025; 11 (1): 120–41. DOI: 10.18413/2658-6533-2025-11-1-0-7.
  5. Lepanto P, Zolessi FR, Badano JL. Studying human genetic variation in zebrafish. In: Cellular and animal models in human genomics research. Elsevier, 2019; 89–117.
  6. de Souza Anselmo C, Sardela VF, Matias BF, de Carvalho AR, de Sousa VP, Pereira HMG, et al. Is zebrafish (Danio rerio) a tool for human-like metabolism study? Drug Test Anal. 2017; 9 (11-12):1685–94. DOI: 10.1002/dta.2318.
  7. Prado E, Matos RR, de Lima G, Geovana M, de Sã CBL, da Costa N, et al. Metabolism of synthetic cathinones through the zebrafish water tank model: a promising tool for forensic toxicology laboratories. Forensic Toxicol. 2021: 73–88. DOI: 10.1007/s11419-020-00543-w.
  8. Russell WMS, Burch RL. The principles of humane experimental technique. Wheathampstead (UK): Universities Federation for Animal Welfare, 1959 (as reprinted 1992).
  9. Mitchell B, Chernick M, Rittschof D, Jayasundara N. Embryonic exposure to irgarol impacts development and larval and juvenile swimming in zebrafish (Danio rerio). Biofouling. 2026; 42 (2): 122–35. DOI: 10.1080/08927014.2025.2595131.
  10. Hoo JY, Kumari Y, Shaikh MF, Hue SM, Goh BH. Zebrafish: A versatile animal model for fertility research. Biomed Res Int. 2016; 2016: 1–2.
  11. OECD, Test No. 236: Fish Embryo Acute Toxicity (FET) Test. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 2. OECD Publishing, Paris, 2025. DOI: 10.1787/9789264203709-en.
  12. Полистовская П. А., Карпенко Л. Ю., Махнин И. А., Ажикина О. Ю. Дехорионизация эмбрионов Danio rerio для оценки острой токсичности органоминеральных хелатных комплексов. Международный вестник ветеринарии. 2024; (1): 99–105. DOI: 10.52419/issn2072-2419.2024.1.9.
  13. Зуб А. В., Загребин В. Л., Дворяшина И. А., Терентьев А. В. Возможность использования биологической модели пресноводной рыбы Данио Рерио в доклинических исследованиях. Вестник ВолГМУ. 2020; 1 (73): 10–13. DOI: 10.19163/1994-9480-2020-1(73)-10-13.
  14. Parng C, Seng WL, Semino C, McGrath P. Zebrafish: a preclinical model for drug screening. Assay Drug Dev Technol. 2002; (1): 41–8.
  15. ГОСТ 32428―2013 «Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Определение хронической токсичности для рыб: 14-дневный тест: межгосударственный стандарт».
  16. ГОСТ 32473―2013 «Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Определение острой токсичности для рыб: межгосударственный стандарт».
  17. ГОСТ 32538—2013 «Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Определение биоконцентрации на рыбах в проточных аквариумах: межгосударственный стандарт».
  18. ГОСТ 32541—2013 «Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Краткосрочное испытание токсичности на эмбрионах и предличинках рыб: межгосударственный стандарт».
  19. ГОСТ 33774—2016 «Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Острая токсичность для эмбрионов рыбы: межгосударственный стандарт».
  20. ГОСТ 32368—2013 «Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Оценка репродуктивной способности рыб: межгосударственный стандарт».
  21. OECD, Test No. 229: Fish Short Term Reproduction Assay. OECD Publishing, Paris, 2009. DOI: 10.1787/9789264076211-en.
  22. OECD, Test No. 425: Acute Oral Toxicity: Up-and-Down Procedure. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 4. OECD Publishing, Paris, 2022. DOI: 10.1787/9789264071049-en.
  23. OECD, Test No. 203: Fish, Acute Toxicity Test. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 2. OECD Publishing, Paris, 2025. DOI: 10.1787/9789264069961-en.
  24. OECD, Test No. 210: Fish, Early-life Stage Toxicity Test. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 2. OECD Publishing, Paris, 2025. DOI: 10.1787/9789264203785-en.
  25. ГОСТ 17.4.3.01—83 «Охрана природы. Почвы. Общие требования к отбору проб: межгосударственный стандарт».
  26. ГОСТ 17.4.4.02—84 «Охрана природы. Почвы. Методы отбора и подготовки проб для химического, бактериологического, гельминтологического анализа: межгосударственный стандарт».
  27. ФР 1.39.2007.03221 «Биологические методы контроля. Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости цериодафний: методика выполнения измерений».
  28. ГОСТ Р 59024—2020 «Вода. Общие требования к отбору проб: национальный стандарт Российской Федерации».
  29. Finney DJ. Probit analysis (2nd ed). J Inst Actuar. 1952; 78 (3): 388–90. DOI: 10.1017/S0020268100052938.
  30. OECD, Test No. 204: Fish, Prolonged Toxicity Test: 14‑Day Study. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 2. OECD Publishing, Paris, 1984. DOI: 10.1787/9789264069985-en.
  31. AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals: 2020 Edition. Schaumburg, IL: American Veterinary Medical Association, 2020; 121 p.
  32. ISO International Standard. Water quality—Evaluation of genotoxicity by measurement of the induction of micronuclei—Part 1: Evaluation of genotoxicity using amphibian larvae. ISO 21427-1, ICS: 13.060.70. Genova—CH, 2006.
  33. Nilén G, Obamwonyi OS, Liem-Nguyen V, Engwall M, Larsson M, Keiter SH. Observed and predicted embryotoxic and teratogenic effects of organic and inorganic environmental pollutants and their mixtures in zebrafish (Danio rerio). Aquat Toxicol. 2022; 248: 106175. DOI: 10.1016/j.aquatox.2022.106175.
  34. Perrichon P, Le Bihanic F, Bustamante P, Le Menach K, Budzinski H, Cachot J, et al. Influence of sediment composition on PAH toxicity using zebrafish (Danio rerio) and Japanese medaka (Oryzias latipes) embryo-larval assays. Environ Sci Pollut Res Int. 2014; 21 (24): 13703–19. DOI: 10.1007/s11356-014-3502-7.